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2006-04-15 00:00
Figure 11.2 Your initial model for weight control
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Figure 11.1 Cross-sectional view of a rat brain
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Figure 10.22 cGMP levels in control and mutant muscle
2006-04-15 00:00
Figure 10.21 Immunofluo-rescence labeling of skeletal muscle
2006-04-15 00:00
Figure 10.20 Pathology of adbn muscle
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Figure 10.19 Location of -dystrobrevin in wt and mutant mice
2006-04-15 00:00
Figure 10.18 Different mutations in calpain and phenotype va
2006-04-15 00:00
Figure 10.17 Effects of caveolin mutation on muscle developm
2006-04-15 00:00
Figure 10.16 Electron micrograph of the cytoplasmic side of
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Figure 10.15 Circuit diagrams of proteins adhering to wt and
2006-04-15 00:00
Figure 10.14 Immunofluorescence detection of proteins adheri
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Figure 10.13.2 Working model of muscle molecules near dystro
2006-04-15 00:00
Figure 10.13.1 Working model of muscle molecules near dystro
2006-04-15 00:00
Figure 10.12 Sarcoglycan/sarcospan protein-protein interac-t
2006-04-15 00:00
Figure 10.11 Sequence chromatograms showing homozygous wt, h
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Figure 10.10 Immunefluorescence localization of muted-sarcog
2006-04-15 00:00
Figure 10.9 Immunofluorescence labeling of biop-sies from th
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Figure 10.8 Circuit diagram summa-rizing dystrophin and asso
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Figure 10.7 Diagram summarizing Laminin dystrophin and assoc
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Figure 10.6 Proposed structure of dystrophin
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Figure 10.5 Immunofluorescent labeling of dystrophin and utr
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Figure 10.4 Inactivated X chromosome
2006-04-15 00:00
Figure 10.3 Karyotypes for the two patients
2006-04-15 00:00
Figure 10.2 Linkage analysis for the families
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Figure 10.1 Histology of wt and patient’s skeletal muscle b
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Figure 9.5 Circuit diagram of 348 nodes and 362 interactions
2006-04-15 00:00
Figure 9.4 Scatter plot of protein vs
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Figure 9.3 Galactose induction of yeast genes
2006-04-15 00:00
Figure 9.2 Comparison of Northern blot and microarray data
2006-04-15 00:00
Figure 9.1 Galactose metabolism in yeast
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Figure 8.30 Computed (solid lines) and observed (black dots)
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Figure 8.29 Predicted consequences of altered gene 1 positio
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Figure 8.28 Wild-type T7 (T7 ) genome contains 56 genes enco
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Figure 8.27 Myc subsection from Kohn’s cell cycle circuit.
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Figure 8.26 Symbolic language created for cell cycle and DNA
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Figure 8.25 Activity profiles of PKA, CaMKII, CaN, and PP1 w
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Figure 8.24 Activity profile
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Figure 8.23 Full-circuit diagram with feedback loop, synapti
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Figure 8.22 Short–term activation of four key enzymes for L
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Figure 8.21 Circuit diagram examining the role of cAMP in LT
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Figure 8.20 Inactivation of LTP by MKP
2006-04-15 00:00
Figure 8.19 Bistability plot for feedback loop
2006-04-15 00:00
Figure 8.18 Activation of the feedback loop
2006-04-15 00:00
Figure 8.17 Computer model matches experimental data
2006-04-15 00:00
Figure 8.16 Circuit diagram of signaling pathway beginning w
2006-04-15 00:00
Figure 8.15 The 15 circuits that were modeled individually b
2006-04-15 00:00
Figure 8.14 Increased need for information as circuits becom
2006-04-15 00:00
Figure 8.13 Mutant alleles affect genome’s reliabil-ity
2006-04-15 00:00
Figure 8.12 Diploid genome requiring two genes(x and y) to p
2006-04-15 00:00
Figure 8.11 Diploid genome with a duplicated gene to produce
2006-04-15 00:00
Figure 8.10 A diploid model to produce B
2006-04-15 00:00
Figure 8.9 A two-gene model to produce B
2006-04-15 00:00
Figure 8.8 A three-gene pathway for the production of protei
2006-04-15 00:00
Figure 8.7 Examples of sister cells that maintain periodicit
2006-04-15 00:00
Figure 8.6 Cyclical toggle switching in live bacteria
2006-04-15 00:00
Figure 8.5 Two plasmids Repressilator Reporter needed to mak
2006-04-15 00:00
Figure 8.4 Experimental two-gene bistable toggle switch
2006-04-15 00:00
Figure 8.3 Theoretical two-gene bistable toggle switch.
2006-04-15 00:00
Figure 8.2 A toggle switch that chooses between coexistence
2006-04-15 00:00
Figure 8.1 Toggle switch circuit
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